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粘液染色

过碘酸-Schiff（PAS）染色法
  试剂配制：
碱性品红 1 g ，活性炭 2 g ，当量盐酸 20 ml ，偏重亚硫酸钠 1.5 g
Schiff 试剂配制:

  1. 碱性品红 1g，放入 200 毫升蒸馏水中，煮沸，搅拌，充分溶解。
  2. 冷却至 50℃ 时过滤，滤液中加入当量盐酸 20 毫升。
  3. 加偏重亚硫酸钠 1.5 g，置于暗处过夜。
  4. 加活性炭 2 g，摇晃，过滤，以无色为最佳。棕色瓶，4℃ 冰箱保存。

所谓 Schiff’s 试剂冷配法，就是将热配法的配方，依次加入容器，用震荡器震荡 2 小时，然后加活性炭 1 克，震荡 10 分钟，过滤便可使用。

染色步骤:

  1. 切片脱蜡至蒸馏水。
  2. 1%过碘酸水溶液 5-10 分钟。
  3. 蒸馏水洗多次。
  4. Schiff 液 10-15 分钟。
  5. 0.5%偏重亚硫酸钠 （钾）水溶液洗 2 次（1-2 分钟）
  6. 流水冲洗 10 分钟。
  7. 苏木素复染。（1-2 分钟）
  8. 酒精脱水，二甲苯透明，树胶封固。
    结果：中性粘液呈红色。

阿尔辛蓝（AB）染色法(pH2.5)
  试剂配制：爱先蓝液： 爱先蓝 8GX 1g ，蒸馏水 97 ml，冰醋酸 3 ml
　　　　　核固红液: 核固红 0.1g，硫酸铝 5g，蒸馏水   97ml
染色步骤:

  1. 切片脱蜡至蒸馏水。
  2. 爱先蓝液染 10 ～ 20 分钟
  3. 蒸馏水洗
  4. 核复染(核固红 5 分钟)，水洗
  5. 脱水,透明,封固。
      结果：唾液酸及弱硫酸化粘液及一般粘液呈蓝色。常用于确定胞浆内空泡的性质，特别是当细胞呈现印戒样特征时。

阿尔辛蓝过碘酸雪夫（AB-PAS）染色法
试剂配制：
爱先蓝液： 爱先蓝 8GX 1g ，蒸馏水 97 ml，冰醋酸 3 ml
核固红液: 核固红 0.1g，硫酸铝 5g，蒸馏水   97ml
碱性品红 1 g ，活性炭 2 g ，当量盐酸 20 ml ，偏重亚硫酸钠 1.5 g
Schiff 试剂配制:

  1. 碱性品红 1g，放入 200ml 蒸馏水中，煮沸，搅拌，充分溶解。
  2. 冷却至 50℃ 时过滤，滤液中加入当量盐酸 20ml。
  3. 加偏重亚硫酸钠 1.5 g，置于暗处过夜。
  4. 加活性 2 g，摇晃，过滤，以无色为最佳。棕色瓶，4℃ 冰箱保存。
    染色步骤:
  5. 切片脱蜡至蒸馏水。
  6. 爱先蓝液染 10 ～ 20 分钟
  7. 蒸馏水洗
  8. 1%过碘酸水溶液 5-10 分钟。
  9. 蒸馏水洗多次。
  10. Schiff 液 10-15 分钟。
  11. 流水冲洗 10 分钟。
  12. 酒精脱水，二甲苯透明，树胶封固。
    结果：中性粘液呈红色，酸性粘液物质呈蓝色。中性与酸性粘液的混合物质呈紫红色。

Southgate 胭脂红染色
试剂配制：

  1. Southgate 贮备液：胭脂红 1g，无水酒精 50ml，蒸馏水 50ml 升，氢氧化铝 1 g，无水氯化铝 0.5 g
        先将无水酒精和蒸馏水 1：1 混合，依次加入试剂，搅拌，水浴中煮沸 3 分钟，冷至室温过滤，并用 50%酒精加至总量 100ml，磨纱瓶冰箱保存。
  2. Southgate 稀释液：用前取 10ml 贮存液加蒸馏水 40ml。
  3. 马休黄液：将马休黄 0.5 g 溶于 100ml95%酒精中,再加入磷钨酸 2 g。
    染色步骤:
  4. 切片脱蜡至水
  5. 苏木素染 5 ～ 10 分钟
  6. 水洗，1%盐酸酒精分化
  7. 水洗，蓝化
  8. Southgate 稀释液染 30 分钟
  9. 水洗
  10. 95%酒精洗二次
  11. 马休黄液复染 15 ～ 20 分钟（这一步可不染）
  12. 水稍洗
  13. 脱水,透明,封固
    结果：酸性粘液及新型隐球菌荚膜呈红色，其他组织黄色。
    粘蛋白染色的应用：
  14. 鉴定粘液性肿瘤、印戒细胞的性质。
  15. 观察慢性气管炎粘液腺的活动状态。
  16. 观察基底膜结构及完整性。
  17. 鉴别肠上皮化生的类型。

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