糖类
多糖类 高碘酸-无色品红-橙黄 G 法（Pearse，1953） 试剂配制：试剂配制：
- 0.5%高碘酸水溶液：高碘酸 0.5g，蒸馏水加至 100ml
- 无色品红液：碱性品红（basic fuchsin）1g，蒸馏水 200ml，1N 盐酸 20ml，偏重亚硫酸钠 1.5g，活性碳 1.5g Schiff 试剂配制:
- 碱性品红 1g，放入 200 毫升蒸馏水中，煮沸，搅拌，充分溶解。
- 冷却至 50℃ 时过滤，滤液中加入当量盐酸 20 毫升。
- 加偏重亚硫酸钠 1.5 g，置于暗处过夜。
- 加活性炭 2 g，摇晃，过滤，以无色为最佳。棕色瓶，4℃ 冰箱保存。
- 0.5%偏重亚硫酸钠溶液：偏重亚硫酸钠 0.5g，蒸馏水加至 100ml
- Mayer 氏苏木素液：苏木素 0.1g，蒸馏水 100ml，碘酸钠 20mg，硫酸铝铵 5g ，柠檬酸 0.1g，水合氯醛 5g 取一只 200 毫升洁净的烧杯盛蒸馏水，加入苏木素用玻棒搅拌使其完全溶解（可稍加温），再加入碘酸钠及硫酸铝铵，搅拌至溶解，最后加入柠檬酸与水合氯醛，此时溶液呈紫红色，过滤于口砂塞瓶内，可保存多月。
- 橙黄 G 染液，橙黄 G2g，蒸馏水 100ml，磷钨酸 5g 先把磷钨酸溶于蒸馏水内，再加入橙黄 G，摇动数分钟使其尽量溶解，静置一夜。用时吸取上清液。 操作方法：
- 切片脱蜡至水。
- 0.5%高碘酸水溶液氧化 5-8 分钟。
- 流水冲洗 2 分钟，再用蒸馏水洗。
- 入无色品红注于暗处并加盖作用 10-20 分钟。
- 0.5%偏重亚硫酸钠液滴洗 2 次，每次约 1 分钟。
- 流水冲洗 2 分钟。
- 天青石蓝液染 2-3 分钟。
- 水洗。
- Mayer 氏苏木素液杂 2-3 分钟。
- 水洗。
- 1%盐酸酒精分化。
- 流水冲洗 10 分钟。
- 橙黄 G 液复染 10-20 秒。
- 水洗。
- 常规脱水透明，中性树胶封固。 结果：胞核呈蓝褐至深褐色，红细胞和肌纤维橙黄色。红至紫红色均为阳性反应。对 PAS 呈阳性反应的物质主要有糖原消化道、呼吸道和睡液腺的粘液，甲状腺胶质，脂褐素，垂体嗜碱细胞，软骨基质，基底膜，霉菌，纤维蛋白。胶原纤维以及一些糖脂类等也呈阳性反应。
糖 原 一、 高碘酸-无色品红法（ MaManus，1948） 试剂配制：试剂配制：
- 0.5%高碘酸水溶液：高碘酸 0.5g，蒸馏水加至 100ml
- 无色品红液：碱性品红（basic fuchsin）1g，蒸馏水 200ml，1N 盐酸 20ml，偏重亚硫酸钠 1.5g，活性碳 1.5g Schiff 试剂配制:
- 碱性品红 1g，放入 200 毫升蒸馏水中，煮沸，搅拌，充分溶解。
- 冷却至 50℃ 时过滤，滤液中加入当量盐酸 20 毫升。
- 加偏重亚硫酸钠 1.5 g，置于暗处过夜。
- 加活性 2 g，摇晃，过滤，以无色为最佳。棕色瓶，4℃ 冰箱保存。
- 0.5%偏重亚硫酸钠溶液：偏重亚硫酸钠 0.5g，蒸馏水加至 100ml
- Mayer 氏苏木素液：苏木素 0.1g，蒸馏水 100ml，碘酸钠 20mg，硫酸铝铵 5g ，柠檬酸 0.1g，水合氯醛 5g 取一只 200 毫升洁净的烧杯盛蒸馏水，加入苏木素用玻棒搅拌使其完全溶解（可稍加温），再加入碘酸钠及硫酸铝铵，搅拌至溶解，最后加入柠檬酸与水合氯醛，此时溶液呈紫红色，过滤于口砂塞瓶内，可保存多月。
- 1%甲基绿水溶液：甲基绿（methyl green）1g，蒸馏水加至 100ml 用三氯甲烷抽提：取 2%甲基绿水溶液 20ml，倾入洁净分液漏斗，加入三氯甲烷 20ml，充分摇荡混合，使其内的甲基紫溶于三氯甲烷中而呈紫红色。旋动分液漏斗下部的砂塞，慢慢地把有着色的三氯甲烷流去。如此反复更换三氯甲烷，直到三氯甲烷无紫红色为止，即可得到得纯的甲基绿溶液。
- 1%淀粉酶：淀粉酶（diastase）1g，蒸馏水加至 100ml
- 唾液：用烧坏收集唾液，加蒸馏水 5-10 倍，用玻棒搅拌数分钟，必要时可用双层纱布过滤。 操作方法：
- 取新鲜薄片组织，立即用 Gendre 氏固定液固定 6-12 小时或 Garnoy 氏液固定 3-6 小时，然后转入 95%酒精，其间可更换两次新液。
- 第二天上午转入无水酒精按常规脱水透明，石蜡包埋，切片厚 4-5μm。
- 取两张连续切片，分别作 1 和 2 记号，然后把 2 片脱蜡至水。
- 把 2 号切片置入预热至 37℃ 的 1%淀粉酶液，于 37℃ 温箱内消化 1 小时，或用预热至 37℃ 的唾液于 37℃ 温箱消化 30 分钟。
- 取出切片水洗。
- 在消化过程中，把 1 片脱蜡至水。
- 在 1、2 两片同时滴入 0.5%高碘酸水溶液氧化 5-8 分钟。
- 流水冲洗 2 分钟，再用蒸馏水洗一次。
- 入无色品红液于暗处并加盖作用 10-20 分钟。
- 用 0.5%偏重亚硫酸钠液滴洗 2 次，每次约 1 分钟。
- 流水冲洗 2 分钟。
- 1%甲基绿水溶液复染胞核 3-5 分钟。或用 Mayer 氏苏木素浅染胞核。
- 水洗。
- 常规脱水透明，中性树胶封固。 结果：胞质内阳性的亮红色颗粒为糖原，经消化后为阴性对照片。
二、胭脂红法（ Best，1906） 试剂配制：
- Best 胭脂红贮备液：胭脂红（carmine）2g，碳酸钾 1g，氯化钾 5g 蒸馏水 60ml 取三角烧瓶一个，加入上述试剂，用玻棒搅动混合，于水浴中慢慢煮沸至颜色变为深红（约 3-5 分钟）。冷却后过滤，加入氢氧化铵 20 毫升，于小口砂塞瓶密封保存于冰箱。
- Best 胭脂红染液：Best 烟脂红贮备液 10ml，氢氧化铵 15ml，甲醇 15ml
- Best 氏分化液：无水酒精 20ml，甲醇 10ml，蒸馏水 25ml 操作方法：
- 新鲜薄片组织立即固定于 Gendre 氏或 Carnoy 氏液。脱水、包埋同前法。
- 切片脱蜡到水。
- Harris 氏苏木素染 5-10 分钟。
- 水洗。
- 1%盐酸酒精分化。
- 流水冲洗 5 分钟。
- 用 Best 胭脂红染液染 20-30 分钟。
- 不用水洗，直接用 Best 氏分化液浸洗二次，每次 1 至数秒钟。
- 95%酒精，无水酒精脱水，二甲苯透明，中性树胶封固。 结果：糖原呈鲜红色，胞核蓝色。